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小分子阻断猪繁殖与呼吸综合征病毒与CD163受体的相互作用和猪细胞感染

摘要

背景

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是影响全球猪肉行业最具经济破坏性的疾病之一。PRRSV是由PRRSV病毒引起的。目前对这种猪疾病没有有效的治疗方法。

方法

通过人工智能分子筛选,我们获得了一组预测靶向PRRSV感染特异性细胞表面受体CD163的清除受体富半胱氨酸结构域5 (SRCR5)的小分子化合物。这些化合物通过基于细胞的双分子荧光互补(BiFC)实验筛选,并通过猪肺泡巨噬细胞(PAMs) prrsv感染实验进一步评估和验证其阳性命中功能。

结果

通过BiFC分析,我们发现了一种具有先前未验证功能的化合物,4-氟-2-甲基- n- [3-(3-morpholin-4-ylsulfonylanilino)喹啉-2-基]苯磺酰胺(此处指定为B7),可显著抑制PRRSV糖蛋白(GP2a或GP4)与CD163-SRCR5结构域之间的相互作用。我们进一步证明,化合物B7以剂量依赖的方式抑制PRRSV主要靶点PAMs的PRRSV感染。B7对ⅰ型和ⅱ型PRRSV株的感染均有显著抑制作用。进一步对与B7结构相关的化合物进行比较和功能评价,发现B7的3-(morpholinsulfonyl)苯胺片段或B7类似物中的3-(胡椒酰磺酰)苯胺片段对抑制PRRSV感染具有重要作用。

结论

我们的研究确定了一种新的策略,通过阻断PRRSV- cd163与小分子的相互作用来潜在地预防猪的PRRSV感染。

介绍

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是经济上最重要的猪疾病之一,每年给全球养猪业造成超过数十亿美元的损失。PRRSV的致病病毒(PRRSV)是一种包膜、阳性意义的单链RNA病毒Arterivirus目内属Nidovirales12]。PRRSV感染导致母猪严重繁殖衰竭和仔猪呼吸道疾病[3.]。这可能并发继发感染,具有更大的临床表现和死亡率[456]。不幸的是,由于PRRSV的高度遗传和抗原异质性,仍然缺乏广泛有效的疫苗[789]。需要采取新的方法来防治PRRS大流行病,以减轻这种疾病的破坏性后果。

繁殖性PRRSV感染主要通过猪肺中的猪肺泡巨噬细胞(PAMs)发生[10]。CD163是一种巨噬细胞特异性膜清道夫受体,是PRRSV感染的关键受体[11121314]。基因敲除研究证实了CD163表达对PRRSV感染的必要性,表明没有CD163的猪对PRRSV具有抗性[151617]。在CD163的9个细胞外清除率受体富半胱氨酸(SRCR)结构域中,SRCR5被发现对PRRSV感染至关重要[18],表达缺失SRCR5的CD163的猪单核/巨噬细胞完全免受PRRSV感染[19]。细胞下拉实验和双分子荧光互补(BiFC)分析显示,PRRSV通过其次要糖蛋白GP2a和GP4直接与CD163相互作用[20.21],结合细胞外但不跨膜或细胞质区域的CD163 [21]。因此,假设CD163-SRCR5结构域直接与PRRSV糖蛋白相互作用是合理的。然而,研究CD163-SRCR5结构域与PRRSV糖蛋白之间蛋白-蛋白相互作用(PPIs)的实验尚未报道。

许多小分子已被确定通过结合和拮抗宿主细胞受体/共受体有效地阻断各种人类病毒的进入[2223242526272829]。然而,PRRSV和CD163之间靶向PPI的小分子尚未报道。最近对猪CD163 x射线晶体结构的研究表明,与srcr -超家族蛋白M2BP和CD5中的同源区域相比,CD163- srcr5结构域环5-6区域(Phe544-Arg570)具有不同的3-D结构排列[30.]。此外,与野生型CD163相比,Arg561在SRCR5环5-6区变为Ala的CD163突变体抑制PRRSV感染[30.]。这就提出了用小分子靶向Arg561区域的猪CD163-SRCR5可能预防PRRSV感染的可能性。在这项研究中,我们开发了一种bfc方法来研究PRRSV糖蛋白与CD163-SRCR5结构域之间的PPI。使用这种方法,我们能够通过AtomNet筛选出一系列预测能结合猪CD163-SRCR5结构域的小分子[31]鉴定抑制PRRSV糖蛋白与SRCR5之间PPI的化合物。我们进一步在体外验证了阳性化合物抑制PAMs PRRSV感染的能力。对B7及其少量类似物的分析揭示了B7对PRRSV感染的抑制活性的重要功能片段。

材料与方法

化学物质、细胞和病毒

所有筛选化合物均由Atomwise, Inc. (CA, USA)通过Mcule, Inc. (CA, USA)作为人工智能分子筛选(AIMS)奖励计划的一部分提供,或直接从MolPort, Inc. (NY, USA)购买。从6头健康的4 - 6个月大和prrsv阴性的长白/约克郡杂交猪身上收获PAMs。简单地说,猪在屠宰前被安乐死。肺在冰上被转移到细胞培养箱中。经气管支气管小心地将含200 U/mL青霉素和200 μg/mL链霉素的温PBS注入双肺。按摩后取出支气管肺泡灌洗液(BALF)。将BALF在400 g离心15 min,所得球粒为PAMs。然后用温热的完整培养基洗涤两次颗粒。细胞计数并在90%牛血清(HI, Rocky Mountain biicals, Inc)和10% DMSO (Sigma)中冷冻。细胞保存在Mr. Frosty冷冻容器(Nalgene, USA)中,在- 80°C下放置过夜,然后转移到液氮中。 PAMs were cultivated in RPMI-1640 (Gibco) supplemented with 10% FBS (HI, Rocky Mountain Biologicals, Inc), 2 mM Glutamax (Invitrogen), 0.1 mM MEM Non-Essential Amino Acids (Gibco), 1 mM sodium pyruvate (Gibco), 100 U/mL penicillin and 100 μg/mL streptomycin (Gibco), and 0.5 μg/mL Amphotericin B (Gibco). All PRRSV strains were propagated and titrated in MARC-145 cells.

目标屏幕

虚拟筛选使用AtomNet进行,AtomNet是第一个用于基于结构的药物设计的深度神经网络,用于预测蛋白质-配体结合亲和力[31]。为了定位猪CD163与PRRSV糖蛋白(GP2a或GP4)的相互作用,利用CD163- srcr5结构域(PDBID:5HRJ)的x射线结构确定了以R561为中心的筛选位点,包括残基C502、S503、D505、W540、A541、E543、A559、P560、R561、P562、D563、G564和C566。如前所述,制备并筛选了市售有机小分子化合物(~ 4 M v20171018)的Mcule文库[32],使用蛋白质配体构象的集合。AtomNet对4个M分子中的每一个都进行了评分和排名,随后,在得到74个化合物进行实验测试之前,对200个化学上不同的化合物进行了进一步的检查,以确定不需要的亚结构和分子性质。

质粒构建

将截断的Venus-I152L的N端和C端分别插入载体主干pMyc-CMV和pCMV-HA中,分别构成商业质粒pifc - vn155 (I152L)和pifc - vc155 (Addgene, Watertown, MA, USA) (Kodama, Y. et al., Biotechniques, 2010)。采用逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)扩增了猪CD163受体清除剂受体富半胱氨酸结构域2 (SRCR2)和SRCR5以及PRRSV vr2332株糖蛋白GP2a和GP4的cDNA片段。将扩增的SRCR2或SRCR5 cDNA片段亚克隆到经EcoRI/BglII酶切的pifc - vn155 (I152L)载体中。为了构建GP2a和GP4融合蛋白,将编码GP2a或GP4的cDNA片段亚克隆到经EcoRI/BglII酶切的pifc - vc155载体中。所有质粒克隆均经DNA Sanger测序验证。

BiFC化验

在12孔板中培养HEK293T细胞,使用FuGENE®6 (Promega, Madison, WI, USA)用合适的质粒转染每个BiFC检测。5 h后,在培养基中加入不同浓度的化合物。以DMSO作为对照。用倒置尼康荧光显微镜捕捉转染质粒后24 h处理细胞的荧光图像。用ImageJ (https://imagej.nih.gov/ij/)。

细胞毒性试验

筛选的化合物在增殖性PRRSV感染的主要宿主细胞PAMs中测定了细胞毒性。简单地说,将不同浓度的化合物加入到24孔板中播种的pam中,并孵育24小时。每孔加50 μl MTT分析标记试剂(In Vitro Toxicology assay Kit, MTT based, Sigma-Aldrich)孵育4 h,每孔加500 μl增溶液孵育过夜,使甲酰胺晶体完全溶解。在600 nm处用分光光度法测定样品的吸光度。经DMSO处理的PAMs作为对照。

定量反转录PCR (qRT-PCR)

根据制造商的说明,使用RNeasy Mini Kit (Qiagen, Germantown, MD)从感染PRRSV的pam中提取总RNA。使用纳米滴分光光度计(Thermo Fisher Scientific)测量RNA浓度。四种PRRSV毒株ORF7基因和猪GAPDH特异性qRT-PCR引物见表52。GAPDH作为管家基因进行基因表达正常化。数据用ABI 7500相关软件处理。

西方墨点法

从HEK293T细胞中分离出全细胞蛋白。简单地说,用冷PBS冲洗细胞两次。去除PBS后,将添加1% (v/v)蛋白酶和磷酸酶抑制剂的冷RIPA缓冲液(ThermoFisher Scientific)加入细胞中,并置于冰上5min。使用Pierce BCA蛋白测定试剂盒(ThermoFisher Scientific)测定蛋白浓度。每个样品中等量的变性蛋白在10% SDS-PAGE上分离,并转移到PVDF膜上。在用Myc-Tag小鼠单克隆抗体(1:1000,Cell Signaling Technology, Danvers, MA)或抗gapdh抗体(1:1000;Cell Signaling Technology, Danvers, MA)在4°C下过夜。用1倍T-BST洗涤后,用酶标二抗(Cell Signaling Technology, Danvers, MA)在室温下孵育1小时,用ECL Blotting底物(Bio-Rad)显像,在ChemiDox XRS图像系统(Bio-Rad)下显像。

PRRSV感染及滴定试验

对于PRRSV感染的PAM细胞,在感染前1天播种PAM。对照细胞用DMSO处理,试验细胞用筛选的化合物(5 ~ 20 μM)处理,接种前4 h,接种过程中1 h,接种后24 h。在MOI = 0.1的条件下,用VR-2332、SDSU73、NADC30或Lelystad PRRSV分别接种细胞1 h。将24 h的细胞培养基上清液保存在- 80°C,以待将来的滴定试验。

在PRRSV滴定试验中,将MARC145细胞接种于48孔板中,接种前培养至~ 80%密度。取病毒上清液,连续稀释10倍,每孔加100 μl稀释液,分6个重复。2 h后将接种物从细胞中取出,每孔用0.5 mL添加2% FBS、2 mM谷氨酰胺、0.1 mM MEM非必需氨基酸、50 U/mL青霉素和50 μg/mL链霉素(Invitrogen)的DMEM代替。细胞在37℃下培养6 d,记录细胞病变效果。采用Reid和m ench法计算PRRSV滴度,以组织培养感染中位剂量(TCID)表示50/毫升)。

统计分析

所有实验均至少进行3次。数据分析采用单因素方差分析和Tukey事后比较或配对t检验。数据以mean±sd和p< 0.05为差异有统计学意义。

结果

建立bic检测方法以鉴定抑制PRRSV和CD163之间PPI的小分子

使用前面描述的BiFC向量[33基于碎片化的金星蛋白(VN-155[I152L],以下简称VN)和(VC-155,以下简称VC),我们建立了猪CD163蛋白SRCR5或SRCR2结构域与VN之间、PRRSV次要糖蛋白(GP2a或GP4)与VC之间的融合蛋白构建体(图4)。1,年代1)。我们在HEK293T细胞中共表达这些质粒,以评估SRCR5结构域与GP2a或GP4之间的PPIs。与CD163-SRCR5在介导PRRSV- cd163相互作用从而导致PRRSV感染中的关键作用一致[1819], CD163-SRCR5/VN融合蛋白(SRCR5-VN)与GP2a-或GP4-VC相互作用,在显微镜下检测到强荧光(图2)。1 b, C(顶板)。相比之下,在PRRSV感染和PRRSV- cd163相互作用中不可或缺的CD163-SRCR2结构域融合蛋白(SRCR2-VN) [18],仅与GP2a-或GP4-VC共表达时显示背景荧光(图2)。1B, c,下面板)。这些数据支持猪CD163-SRCR5结构域直接与PRRSV糖蛋白GP2a和GP4相互作用。

图1
图1

建立抑制PRRSV和CD163之间PPI的bic测定方法和筛选化合物。一个猪CD163 SRCRs或PRRSV次要包膜糖蛋白分别与Venus蛋白VN155(I152L)或VC155片段融合蛋白构建方案图。b左图:将SRCR5-VN或SRCR2-VN质粒与GP2a-VC共转染HEK293T细胞,转染后24 h荧光图像。Bar = 250 μm。右图:斐济细胞荧光定量。平均值±SD。n= 3。**:p< 0.01。c左图:将SRCR5-VN或SRCR2-VN质粒与GP4-VC共转染HEK293T细胞,转染后24 h荧光图像。Bar = 250 μm。右:定量的相对荧光强度。平均值±SD。n= 3。**: p < 0.01。d化合物B7的化学结构。e左图:SRCR5-VN和GP2a-VC蛋白间的BiFC分析。以DMSO为对照,显示化合物B7有正向抑制作用,B8无正向抑制作用。Bar = 250 μm;右:定量的相对荧光强度。均值±SD, n = 3。f左图:SRCR5-VN和GP4-VC蛋白间的bic分析显示B7化合物对SRCR5-VN有相似的抑制作用,而B8没有。Bar = 120 μm。右:定量的相对荧光强度。均值±SD, n = 3

然后,我们询问我们建立的BiFC检测是否可以用于鉴定有可能阻断CD163与PRRSV之间相互作用的小分子。使用AtomNet对以R561为中心的区域进行了商业小分子库的定制虚拟筛选(图5)2),基于猪CD163-SRCR5结构域的三维蛋白结构[30.],并获得了74种预测靶向该潜在结合区域的化合物。然后,我们使用我们的bbic分析来测试这些化合物,以评估它们抑制GP2a和SRCR5之间PPI的能力。质粒在HEK293T细胞中共转染,4 h后,分别在5 μM细胞上施加化学物质。24 h后,在荧光显微镜下拍照,定量荧光。在所有74种化合物中,我们鉴定了1种阳性化合物,本文命名为B7(4-氟-2-甲基- n- [3-(3-morpholin-4-酰基磺酰苯胺)喹啉-2-基)苯磺酰胺,C25H24FN5O5年代2,无花果。1d、表51),在我们的BiFC实验中显著抑制了重组荧光(图2)。1e)。通过另一种bbc实验,我们进一步验证了B7也能抑制PRRSV GP4糖蛋白与CD163-SRCR5结构域之间的PPI(图3)。1f)。

化合物B7对PAMs PRRSV感染的抑制作用

基于B7对CD163-SRCR5结构域与PRRSV糖蛋白相互作用的抑制作用,我们想知道该化合物是否会抑制pam的PRRSV感染。MTT实验表明,在25 μM以下的浓度下,B7化合物对pam具有良好的耐受性50计算(34]为81.7 μM(图5)3.)。分别用B7在0、5、10、15、20 μM条件下对原代PAMs进行预处理4 h,然后接种PRRSV病毒株VR-2332 (MOI = 0.1) 1 h。然后将感染的pam与不同浓度的B7连续孵育。接种24 h后,从pam中提取总rna。定量反转录-PCR (qRT-PCR)显示B7处理对PAMs的PRRSV感染具有剂量依赖性的抑制作用(图7)。2a).从感染的PAMs培养基中对PRRSV进行滴定进一步证实,10 - 20 μM B7处理能有效抑制PAMs的PRRSV感染,10 μM B7和15 μM B7处理能分别使病毒滴度降低1.7和2.9 log(图2)。2b), B7的IC50值为7.5 μM。选择指数是衡量药物细胞毒性与选择活性之间的窗口值,根据LC的比值,本研究估计B7化合物的选择指数为10.950/集成电路50类似于前面所描述的[35]。

图2
图2

化合物B7对PAMs PRRSV感染的抑制作用一个qRT-PCR检测不同浓度B7化合物处理的PAMs感染PRRSV病毒株VR-2332提取的PRRSV总rna。数值用PAMs的GAPDH归一化。柱形图= mean±SD, n = 3。* * *:P< 0.001。ns:非标准。b经处理的pam培养基中PRRSV的滴定测定结果一个)。柱形图= mean±SD, n = 3。**:P< 0.01, ***: p < 0.001。ns:非标准。c用15 μM B7化合物处理不同PRRSV菌株感染的pam中提取的PRRSV总rna的qRT-PCR分析。数值用PAMs的GAPDH归一化。柱形图= mean±SD, n = 3。**:P< 0.01。d经处理的pam培养基中PRRSV的滴定测定结果c)。柱形图= mean±SD, n = 3。**: p < 0.01

进一步检测了B7对多种PRRSV病毒株的抑制作用。15 μM B7预处理4 h后,分别与PRRSV病毒株VR-2332、SDSU73、NADC30 (II型)或Lelystad (I型)接种1 h, 15 μM B7连续孵育24 h。qRT-PCR显示,B7处理显著降低了所有PRRSV菌株感染pam中检测到的病毒RNA(图2)。2c).这种抑制作用通过感染pam培养基的病毒滴定结果进一步证实,3种II型PRRSV菌株的病毒滴度降低了2.8-3.1对数,15 μM B7处理后I型菌株(Lelystad)的病毒滴度降低了2.2对数(图2)。2d).因此,化合物B7确实抑制了PAMs的PRRSV感染。

基于蛋白质配体构象的AtomNet平台筛选和我们的BiFC分析结果表明,B7与CD163-SRCR5直接结合,而不是单独与GP2a和GP4结合,以阻断CD163-PRRSV相互作用。为了进一步排除B7直接靶向PRRSV糖蛋白的可能性,我们用15 μM B7或DMSO培养PRRSV VR-2332株病毒,然后进行直接病毒滴定试验。如果B7直接靶向PRRSV糖蛋白,则与B7预先孵育的病毒相比,其传染性应降低。然而,没有观察到病毒滴度的显著降低(图5)4)。综上所述,我们的研究结果支持化合物B7通过靶向CD163-SRCR5结构域抑制PRRSV感染。

评价化学结构与B7相似的化合物对PRRSV感染的抑制作用

B7是一种合成化合物,具有先前未经证实的功能。为了检验B7支架与PRRSV感染抑制的结构相关性,我们在PubChem上搜索了类似的化合物,并获得了另外6个与B7结构相关的化合物(本文命名为B7- a1至A6,图6)。3.a、表S1)。我们首先使用我们的bic实验来检查这些B7类似物是否可以抑制CD163-SRCR5结构域和PRRSV GP2a蛋白之间的PPI。与B7类似,化合物B7- a1至B7- a4均显著抑制CD163-SRCR5/GP2a PPI。3.b, c)。有趣的是,将B7的3-(morpholinsulfonyl)苯胺基部分转移到4-(morpholinsulfonyl)苯胺基位置(B7- a2),或将前者部分改变为3-(胡椒酰磺基)苯胺基(B7- a4,蓝色圆圈)并不会消除这些化合物抑制CD163-SRCR5/GP2a PPI的能力(图7)。3.b, c)。然而,在化合物B7-A5和B7-A6中,用morpholine取代3-(胡椒酰磺酰)苯胺或3-(morpholinsulfonyl)苯胺片段(图7)。3.a,红圈)完全阻断了它们抑制CD163-SRCR5/GP2a相互作用的能力(图2)。3.b, c)。

图3
图3

结构类似B7的化合物对PRRSV感染的抑制效果评价一个B7类似物(B7- a1 ~ A6)与B7的分子结构比较。bSRCR5-VN与GP2a-VC蛋白间的bic分析。以DMSO为键的代表性荧光图像显示化合物B7及其类似物对SRCR5-GP2a PPI的影响不同。Bar = 250 μm。c的相对荧光强度b)由斐济量化。均值±SD, n = 3。**: p < 0.01, ***: p < 0.001。ns:非标准。d用15 μM B7及其类似物处理过的PRRSV病毒株VR-2332感染的pam中提取的PRRSV总rna的qRT-PCR分析。数值用PAMs的GAPDH归一化。柱形图= mean±SD, n = 3。*:P< 0.05, **: p < 0.01。e经处理的pam培养基中PRRSV的滴定测定结果d)。柱形图= mean±SD, n = 3。*: p < 0.05, **: p < 0.01。ns:与

为了确认这些化合物的功能,我们进一步评估了化合物B7-A1至B7-A5对PAMs PRRSV感染的作用。MTT实验显示,这些化合物在15 μM水平下对pam没有明显的细胞毒性作用(图5)5)。分别用每种化合物的15 μM对pam进行预处理4 h,然后用PRRSV病毒株VR-2332接种1 h。然后用15 μM的相同化合物连续孵育细胞。24 h时,从感染的PAMs中提取总RNA, qRT-PCR显示,与B7类似,化合物B7- a1至B7- a4与对照相比,均显著抑制了处理后PAMs中的PRRSV RNA水平(图7)。3.d)。此外,与我们的bbc结果一致,B7-A5治疗未能抑制感染pam中的PRRSV RNA水平(图5)。3.d).感染细胞24 h培养基的滴定进一步证实了我们的发现,表明化合物B7-A1至B7-A4而非B7-A5都能抑制PAMs的PRRSV感染,化合物B7-A1至A4处理的病毒滴度分别降低2.2、2.4、1.2和2.8对数(图7)。3.综上所述,我们的研究结果表明,3-(morpholinsulfonyl)苯胺片段(在B7和B7- a1至B7- a3中)和3-(胡椒酰磺酰基)苯胺片段(在B7- a4中)对这些化合物对PRRSV感染的抑制作用是重要的。

单独使用3-(morpholinsulfonyl)苯胺或3-(哌啶基磺酰)苯胺不能抑制PRRSV感染,而B7治疗后可显著抑制PRRSV感染

我们还注意到,从B7(化合物B7- a1, A2和A3)的苯磺酰胺部分去除甲基和/或氟基团,图7。3.a)在BiFC实验中减弱了化合物的抑制功能(图2)。3.b, c)和PRRSV感染试验(图2)。3.D, e),尽管效果不如修饰3-(morpholinsulfonyl)苯胺部分那么显著。为了确定3-(morpholinsulfonyl)苯胺基或3-(哌啶基磺酰)苯胺基化学基团是否足以抑制PRRSV感染,我们购买了这两种化合物,并分别命名为B7-A7和B7-A8(图7)。4a).每个分子15 μM的PAMs处理4 h,然后接种1 h PRRSV VR-2332。然后将细胞与相同的化合物孵育24小时。从处理过的细胞培养基中对PRRSV进行滴定显示,这两种化合物都不能抑制pam的PRRSV感染(图2)。4b).因此,虽然这两个片段在功能上至关重要,但其他片段(如苯磺酰胺)的存在对于抑制PRRSV感染也是必不可少的。

图4
图4

3-(morpholinsulfonyl)苯胺或3-(哌啶基磺酰)苯胺不能单独抑制PRRSV感染,而B7治疗后可显著抑制PRRSV感染。一个B7-A7和B7-A8的分子结构。b分别用B7、B7- a7和B7- a8处理和感染PRRSV V-2332的pam培养基的滴定分析结果。柱形图= mean±SD, n = 3。***: p < 0.001。ns:非标准。c用15 μM的B7化合物处理感染PRRSV VR-2332的pam,接种前后提取总rna的qRT-PCR检测PRRSV。数值用PAMs的GAPDH归一化。柱形图= mean±SD, n = 3。*:P< 0.05。ns:非标准。d经处理的pam培养基中PRRSV的滴定测定结果c)。柱形图= mean±SD, n = 3。***: p < 0.001。ns:与

在验证了接种前后B7对PRRSV感染的抑制作用后,我们进一步询问单独接种B7或接种前后是否有显著效果。接种B7 4 h后接种PRRSV -2332株1 h,不进行后处理;接种PRRSV 24 h后不进行后处理。在感染后24小时,我们评估了PAMs中的病毒RNA和培养基中的PRRSV滴度。qRT-PCR显示,B7单独处理后对PRRSV感染的抑制效果与预处理后加预处理相似,而预处理后的影响最小(图5)。4c).对感染的pam培养基进行病毒滴定进一步证实了这一点,单独接种后处理化合物B7可使PRRSV滴度降低2.8 log(图2)。4d)。

先前的研究表明,在生产感染过程中,CD163介导PRRSV脱壳而不是内化[363738],这是病毒粒子内化到宿主细胞后的一步。然而,PRRSV的结合和内化是由其他受体/共受体介导的,例如硫酸肝素和唾液粘附素[39]。为了验证B7是否会影响PRRSV的结合,我们在PRRSV接种期间将PAMs与15 μM B7或DMSO对照孵育1小时。接种后立即用qRT-PCR评价PAMs与PRRSV的结合情况,并反复清洗去除未结合的病毒。我们发现B7在接种1小时内孵育不影响PRRSV的结合(图5)6)。此外,我们已经发现B7接种后处理与接种前加接种后处理具有相当的抗prrsv效果(图2)。4c, d)。综上所述,我们的研究结果与之前发现的机制一致,即CD163与PRRSV GP2a和GP4相互作用,介导内核体酸化后PRRSV脱衣,以确保有效的病毒感染,而不是介导病毒的结合和内化[39]。

讨论

尽管猪CD163-SRCR5结构域被确定为PRRSV感染的关键,表明PRRSV与SRCR5结构域之间存在直接相互作用,但尚未有研究报道证实这一特定的PPI。通过bic分析,我们证实CD163-SRCR5结构域可以直接与PRRSV糖蛋白GP2a和GP4相互作用。这与最近的报道有关,缺乏CD163-SRCR5结构域的转基因猪对PRRSV感染具有抗性[4041]。我们进一步发现一个可以阻断CD163-SRCR5结构域与PRRSV糖蛋白相互作用的小分子B7也能在体外抑制pam的PRRSV感染。我们在此报道的BiFC检测对于进一步筛选能够阻断PRRSV和CD163之间PPIs的小分子具有重要价值。

我们注意到5 μM B7足以抑制GP2a/GP4a与CD163-SRCR5之间的相互作用(图3)。1e, f),而需要更高的浓度才能显著抑制病毒复制(图2)。2a, b)。我们推断,这种差异可能源于B7化合物在bcc和PRRSV感染试验中分别在非常不同的情况下起作用。首先,在bbc实验中,只有单一的PRRSV糖蛋白GP2a或GP4作为融合蛋白表达。然而,在PRRSV感染实验中,GP2a和GP4都在病毒粒子包膜上固有表达。其次,PAMs用于PRRSV感染实验,这与bic实验中使用的转化HEK293T细胞系有很大不同。这些都可能导致测定对B7化合物敏感性的差异。

PRRSV 3种小包膜糖蛋白GP2a、GP3和GP4之间的相互作用是PRRSV感染所必需的[2142]。此外,GP5是PRRSV包膜中不可缺少的主要糖蛋白,对病毒颗粒的产生至关重要[42]。虽然所有的PRRSV糖蛋白相互之间都表现出一定的相互作用,但只有GP2a和GP4特异性地与CD163受体相互作用[21]。因此,我们的研究主要集中在研究阻断CD163与GP2a/GP4的相互作用。然而,GP5是病毒包膜中不可或缺的一部分,可能对PRRSV在感染细胞中的复制至关重要[20.]。最近也有研究表明GP5与非肌肉肌球蛋白重链9相互作用,通过病毒内化机制对PRRSV感染很重要[43]。先前的研究表明,CD163介导PRRSV脱壳而不是内化,从而导致多产性病毒感染[363738]。因此,我们有理由推测,在病毒感染过程中,GP2a/4和GP5介导了不同的后续过程。

我们发现单独接种B7后处理对PRRSV感染的抑制程度与接种前加接种后处理相似,而单独接种前处理无明显效果。这表明B7化合物与CD163-SRCR5蛋白结构域之间存在可逆关联,通过洗涤去除B7化合物可以解除对PRRSV糖蛋白与CD163-SRCR5相互作用的抑制作用。进一步的精细构效关系(SAR)分析将揭示B7与SRCR5分子-分子结合的本质。

尽管做出了许多努力,但目前还没有开发出广泛有效的疫苗来保护猪免受PRRSV的侵害[9]。需要开发新的方法来控制猪的PRRS。用天然或合成化合物抑制PRRSV和CD163之间的关键PPIs是对抗PRRSV大流行病的一种独特方法,可以用作疫苗接种的佐剂,以进一步减少病毒载量和脱落。到目前为止,化合物B7没有已知的生物活性报告。B7对PAMs的PRRSV感染具有明显的剂量依赖性抑制作用,这使得该化合物及其衍生物成为进一步评估其体内抑制PRRSV感染功效的明确候选者。我们的研究结果表明,B7及其类似物的抑制功能取决于完整的3-(morpholinsulfonyl)苯胺或3-(piperidinylsulfonyl)苯胺片段,这为开发更有效的抗PRRSV感染化合物提供了进一步的线索。这一发现,以及对参与PRRSV识别的CD163-SRCR5结构域关键残基的全面了解,将为靶向筛选抗PRRS的有效化合物提供相关信息。

结论

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是一种传染病,每年给全球猪肉行业造成数十亿美元的损失。目前没有有效的疫苗治疗PRRS。巨噬细胞特异性表面受体CD163是猪感染PRRS病毒(PRRSV)所必需的。通过虚拟筛选,我们获得了74个预测靶向CD163的清除率受体富半胱氨酸结构域5 (SRCR5)的小分子。通过基于细胞的双分子荧光互补(BiFC)实验,我们在这些小分子中发现了一种化合物(这里指定为B7),它可以显著阻断PRRSV糖蛋白与CD163-SRCR5结构域之间的相互作用。我们进一步证实,化合物B7能抑制多种PRRSV毒株对猪肺泡巨噬细胞(PAMs)的感染,而PAMs是PRRSV的主要靶点。进一步的功能分析表明,B7类似物中的3-(morpholinsulfonyl)苯胺片段或3-(胡椒酰磺酰)苯胺片段对这种抑制作用很重要。我们的研究确定了一种利用小分子潜在地预防猪PRRSV感染的新策略。

数据和材料的可用性

本研究中使用和/或分析的数据集可应通讯作者的合理要求向其提供。

缩写

BiFC:

双分子荧光互补

PAMs:

猪肺泡巨噬细胞

PPI:

蛋白质相互作用

PRRS:

猪繁殖与呼吸综合征

PRRSV:

PRRS病毒

存在:

定量逆转录聚合酶链反应

SRCR5:

清道夫受体富半胱氨酸结构域

白平衡:

西方墨点法

参考文献

  1. 冠状病毒科和动脉病毒科组成的新目。医学杂志。1997;142:629-33。

    中科院PubMed谷歌学者

  2. Benfield DA, Nelson E, Collins JE, Harris L, Goyal SM, Robison D, Christianson WT, Morrison RB, Gorcyca D, Chladek D.猪不孕症和呼吸综合征(SIRS)病毒(ATCC vr2332分离株)的鉴定。中华检验医学杂志,1992;4(4):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  3. 猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)病毒结构蛋白和非结构蛋白在病毒发病机制中的作用。动物健康,2010;11:35 - 63。

    文章谷歌学者

  4. “PRRS Plus”-PRRS病毒与其他病原体的联合感染。假设。1998;1997:1998b - 2000。

    谷歌学者

  5. Zimmerman JJ, Yoon KJ, Wills RW, Swenson SL. PRRSV总体概况:来自美国的视角。兽医微生物。1997;55:187-96。

    文章中科院谷歌学者

  6. 田坤,于翔,赵涛,冯勇,曹忠,王超,胡勇,陈旭,胡东,田翔,等。致命PRRSV变异的出现:中国非典型PRRS的空前暴发和独特标志的分子解剖。科学通报,2007;2:526。

    文章谷歌学者

  7. 孟XJ。猪繁殖与呼吸综合征病毒的异质性:对当前疫苗效力和未来疫苗开发的影响兽医与微生物学杂志。2000;74:309-29。

    文章中科院谷歌学者

  8. Murtaugh MP, Stadejek T, Abrahante JE, Lam TT, Leung FC。猪繁殖与呼吸综合征病毒的多样性不断扩大。病毒研究。2010;154:18-30。

    文章中科院谷歌学者

  9. 南颖,吴超,顾刚,孙伟,张玉军,周爱明。PRRSV改良疫苗的研究进展与展望[j]。中华微生物学杂志,2017;8:1635。

    文章谷歌学者

  10. Murtaugh MP, Xiao Z, Zuckermann F.猪对猪繁殖与呼吸综合征病毒感染的免疫反应。病毒免疫。2002;15:53 - 47。

    文章中科院谷歌学者

  11. 张建军,张建军,张建军,张建军。猪繁殖与呼吸综合征病毒CD163基因的表达及其对猪繁殖与呼吸综合征病毒的易感性研究。中国生物医学工程学报,2007;31(1):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  12. 陈建军,陈建军,陈建军,陈建军。稳定转染唾液黏附素和CD163制备猪繁殖与呼吸综合征病毒易感细胞系。生物工程学报。2010;10:48。

    文章谷歌学者

  13. 刘建军,张建军,李建军,等。猪肺泡巨噬细胞的分离与克隆。J病毒方法。2002; 104:203-16。

    文章中科院谷歌学者

  14. 李玉军,朴志强,南娥,金诗诗,李玉生,杜李生,李超。猪繁殖与呼吸综合征病毒肺泡巨噬细胞的培养。中华微生物学杂志,2010;32(3):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  15. Whitworth KM, Rowland RR, Ewen CL, Trible BR, Kerrigan MA, Cino-Ozuna AG, Samuel MS, Lightner JE, McLaren DG, milham AJ,等。基因编辑的猪可以免受猪繁殖和呼吸综合征病毒的侵害。生物工程学报。2016;34:20-2。

    文章中科院谷歌学者

  16. 完整的唾液粘附素(Sn/SIGLEC1/CD169)并不需要猪繁殖与呼吸综合征病毒的附着/内化。中国生物医学工程学报,2013;37(2):591 - 591。

    文章中科院谷歌学者

  17. Wells KD, Bardot R, Whitworth KM, Trible BR, Fang Y, milham A, Kerrigan MA, Samuel MS, Prather RS, Rowland RR。用CD163样同源物取代猪CD163清道夫受体富含半胱氨酸的结构域5可以使猪对基因1型猪繁殖与呼吸综合征病毒产生抗性,但对基因2型猪繁殖与呼吸综合征病毒没有抗性。中国生物医学工程学报,2017;31(1):591 - 591。

  18. 范戈普,范布里达姆,范·杜尔斯勒尔,杜尔普特,诺温克,HJ。猪繁殖与呼吸综合征病毒感染相关CD163蛋白结构域的鉴定中国生物医学工程学报,2010;34(4):391 - 391。

    文章谷歌学者

  19. Burkard C, Lillico SG, Reid E, Jackson B, Mileham AJ, Ait-Ali T, Whitelaw CB, Archibald AL.猪PRRSV抗性的精确工程:缺失CD163 SRCR5结构域的基因组编辑猪巨噬细胞在保持生物学功能的同时完全抵抗两种PRRSV基因型。中华医学杂志,2017;13:e1006206。

    文章谷歌学者

  20. 魏志,田东,孙丽,林涛,高峰,刘锐,佟刚,袁生。猪繁殖与呼吸综合征病毒小蛋白n -链糖基化对病毒恢复及受体相互作用的影响。病毒学。2012;429:1-11。

    文章中科院谷歌学者

  21. Das PB, Dinh PX, Ansari IH, de Lima M, Osorio FA, Pattnaik AK。猪繁殖与呼吸综合征病毒的次要包膜糖蛋白GP2a和GP4与受体CD163相互作用。中国生物医学工程学报,2010;34(4):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  22. Watashi K, Sluder A, Daito T, Matsunaga S, Ryo A, Nagamori S, Iwamoto M, Nakajima S, Tsukuda S, Borroto-Esoda K,等。环孢素a及其类似物通过靶向膜转运体牛磺酸胆酸钠共转运多肽(NTCP)抑制乙型肝炎病毒进入培养的肝细胞。肝脏病学。2014;59:1726-37。

    文章中科院谷歌学者

  23. 王晓军,胡伟,张泰,毛云云,刘宁宁,王思远。厄贝沙坦是FDA批准的用于高血压和糖尿病肾病的药物,是一种通过干扰Na(+)依赖性牛磺胆酸共转运多肽活性来抑制乙型肝炎病毒进入的有效抑制剂。红伞学报。2015;120:140-6。

    文章中科院谷歌学者

  24. Nkongolo S, Ni Y, Lempp FA, Kaufman C, Lindner T, Esser-Nobis K, Lohmann V, Mier W, Mehrle S, Urban S.环孢素a对乙型肝炎和丁型肝炎病毒侵入的抑制作用。国际肝病杂志,2014;32(2):444 - 444。

    文章中科院谷歌学者

  25. Kaneko M, Watashi K, Kamisuki S, Matsunaga H, Iwamoto M, Kawai F, Ohashi H, Tsukuda S, Shimura S, Suzuki R,等。一种新型三环聚酮,Vanitaracin A,通过靶向牛磺酸胆酸钠共转运多肽特异性抑制乙型和丁型肝炎病毒的进入。中华微生物学杂志,2015;39(1):1 - 4。

    文章中科院谷歌学者

  26. Kaneko M, Futamura Y, Tsukuda S, Kondoh Y, Sekine T, Hirano H, Fukano K, Ohashi H, Saso W, Morishita R,等。化学阵列系统,一个鉴定以牛磺胆酸钠共转运多肽为靶点的新型乙型肝炎病毒进入抑制剂的平台。科学通报2018;8:2769。

    文章谷歌学者

  27. 钱凯,Morris-Natschke SL, Lee KH。HIV进入抑制剂及其在HIV治疗中的潜力。医学研究,2009;29:369-93。

    文章中科院谷歌学者

  28. Kuritzkes博士HIV-1进入抑制剂:综述。当前观点:艾滋病毒/艾滋病。2009; 4:82-7。

    文章谷歌学者

  29. Briz V, Poveda E, Soriano V. HIV进入抑制剂:作用机制和耐药途径。中国生物医学工程学报,2006;22(1):444 - 444。

    文章中科院谷歌学者

  30. 马宏,姜林,乔生,志勇,陈晓霞,杨燕,黄霞,黄敏,李锐,张国平。猪CD163第五清道夫受体富半胱氨酸结构域的晶体结构揭示了猪生殖与呼吸综合征病毒感染的重要残基。中华微生物学杂志,2017;91。

  31. 张建军,张建军,张建军,等。基于深度卷积神经网络的生物活性预测研究。arxivorg。2015;arXiv预印本arXiv:1510.02855。

  32. 谢超,李丽,Vanhauwaert R, Nguyen KT, Davis MD, Bu G, Wszolek ZK,王旭。Miro1标记帕金森病亚群和Miro1减少物拯救帕金森模型中的神经元损失。中国生物医学工程学报,2019;30(3):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  33. 杨玉华,胡建明。一种新型的高信噪比双分子荧光互补检测方法。生物学技术。2010;49:793 - 805。

    文章中科院谷歌学者

  34. 芬尼DJ。概率分析:对s型响应曲线的一种统计处理。剑桥:剑桥大学出版社,剑桥。1952;78:388-90。

  35. Koch A, Tamez P, Pezzuto J, Soejarto D.肯尼亚马赛人用于抗疟疾治疗的植物评价。中国生物医学工程学报,2009;31(1):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  36. 范德海登N, Delputte PL, Favoreel HW, Vandekerckhove J, Van Damme J, Van Woensel PA, Nauwynck HJ。唾液黏附素参与猪繁殖与呼吸综合征病毒进入猪肺泡巨噬细胞。中华病毒学杂志,2003;37(1):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  37. 范戈普,范布里德姆W, Delputte PL, Nauwynck HJ。唾液粘附素和CD163在猪繁殖与呼吸综合征病毒的进入过程中联合起来。中国生物医学工程学报,2008;39(1):444 - 444。

    文章谷歌学者

  38. 范戈普,范布里德姆W, Delputte PL, Nauwynck HJ。猪繁殖与呼吸综合征病毒需要通过cd163阳性的早期内体运输,而不是晚期内体,以进行生产感染。生物学报。2009;154:1939-43。

    文章谷歌学者

  39. Van Breedam W, Delputte PL, Van Gorp H, Misinzo G, Vanderheijden N, Duan X, Nauwynck HJ。猪繁殖与呼吸综合征病毒进入猪巨噬细胞。中国生物医学工程学报,2010;31(1):444 - 444。

    文章谷歌学者

  40. 郭超,王敏,朱忠,何生,刘宏,刘霞,石霞,唐涛,于平,曾杰,等。高效繁殖携带部分缺失CD163 SRCR5结构域的猪,这些猪完全抵抗猪生殖与呼吸综合征病毒2型感染。免疫学杂志,2019;10:18 . 46。

    文章中科院谷歌学者

  41. 引用本文:Burkard C, Opriessnig T, iliham AJ, Stadejek T, aitali T, Lillico SG, Whitelaw CBA, Archibald AL.缺乏CD163清道夫受体富半胱氨酸结构域5的猪对猪繁殖与呼吸综合征病毒1型感染的抗性。中国生物医学工程学报,2018;32。

  42. 刘建军,李建军,李建军,李建军,李建军。猪繁殖与呼吸综合征病毒感染性病毒粒子组装所需包膜蛋白。中国生物医学工程学报,2009;39(1):391 - 391。

    文章中科院谷歌学者

  43. 薛波,侯刚,张刚,黄健,李磊,南毅,穆毅,王磊,张磊,韩旭,等。与PRRSV GP5外域直接相互作用诱导的MYH9聚集促进了病毒被允许细胞内化。微生物学前缘,2019;10:2313。

    文章谷歌学者

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致谢

不适用。

资金

本研究由美国农业部/国家粮食和农业研究所(NIFA)资助2017-67016-26675给Y.T.和a.g., Atomwise Inc.。人工智能分子筛选(AIMS)奖授予Y.T.,康涅狄格健康创新治疗计划(PITCH)有前途项目奖授予Y.T.和A.G.,康涅狄格大学卓越研究计划授予Y.T.和A.G.

作者信息

作者及单位

作者

贡献

c.h.、a.g.和Y.T.设计并执行了这项研究,分析了数据,并撰写了手稿。D.B.进行虚拟筛选和材料,J.Z.帮助收集PAMs, PRRSV传播,滴定和数据分析。R.C.D和M.K.H.提供了结构分析并修改了手稿。a.c., a.k., A.H.帮忙做了qRT-PCR。作者阅读并批准了最后的手稿。

相应的作者

对应到安东尼奥Garmendia年轻的唐

道德声明

伦理批准并同意参与

本研究中使用的猪肺泡巨噬细胞(pam)是根据康涅狄格大学机构动物护理和使用委员会(IACUC)批准的协议(A17-004)从猪身上采集的。

发表同意书

不适用。

相互竞争的利益

根据这项研究的结果,提出了一项临时专利申请。

额外的信息

出版商的注意

伟德体育在线施普林格·自然对已出版的地图和机构关系中的管辖权要求保持中立。

补充信息

附加文件1图S1。

bbc SRCR5-VN、SRCR2-VN和载体VN蛋白的Western Blotting。图S2。用于虚拟筛选的CD163靶点(显示残基)。图S3。B7化合物与PAMs孵育24 h的MTT测定。图S4:用DMSO或B7孵育PRRSV的直接滴定。图S5。B7及其类似物与PAMs孵育24 h的MTT测定。图S6。PRRSV结合试验。表S1。B7和B7类似物的筛选。表S2。本研究使用的引物序列。

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黄,C,伯纳德,D,朱,J。et al。小分子阻断猪繁殖与呼吸综合征病毒与CD163受体的相互作用和猪细胞感染。性研究J17, 116(2020)。https://doi.org/10.1186/s12985-020-01361-7

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  • 猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)
  • PRRS病毒(PRRSV)
  • CD163
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