跳到主要内容

探讨小儿肌肉功能试验与肌节组织的相关性C线虫

摘要

背景

秀丽隐杆线虫已被广泛用作研究肌肉结构和功能的模型。它的体壁肌肉在功能和结构上与脊椎动物的骨骼肌相似,具有保守的分子通路,有助于肌节结构和肌肉功能。然而,肌肉力量和肌节组织之间的关系缺乏系统的调查。在这里,我们研究了各种肌节蛋白和膜附着成分对肌肉结构和功能的贡献C线虫作为研究肌肉力量遗传基础的模式生物。

方法

我们采用两个最近开发的测试,涉及肌肉力量的发挥,以调查肌肉功能与肌节组织的相关性。我们使用了一种名为NemaFlex的基于微流控柱的平台,该平台可以量化最大可施加的力,并对动物在化学刺激下进行三维运动进行洞穴测试。我们选择了20个在肌节不同亚结构中存在已知缺陷的突变体,并比较了肌肉蛋白产生和传递力所需的生理功能。我们还使用免疫染色方法描述了肌节紊乱的程度。

结果

我们发现,在细丝、粗丝和m系中具有遗传缺陷的突变体通常较弱,并且我们的分析能够成功地检测到每个肌节检测位置对应的功能变化。我们发现NemaFlex和穴居分析在肌肉生理学的不同方面具有不同的功能。具体来说,钻洞试验在显型肌肉突变体中具有更大的带宽,因为它可以在NemaFlex中发挥正常肌肉力量时选择10个额外的受损突变体。这使我们能够结合他们的读数来开发一个综合的肌肉功能评分,该评分被发现与肌肉结构紊乱的评分相关。

结论

我们的结果强调了NemaFlex和挖穴试验在评估肌肉生理机能方面的适用性C线虫.使用这些方法,我们讨论了所研究的肌节蛋白对肌肉功能和结构的重要性。我们所开发的评分方法提高了的实用性C线虫作为研究肌肉功能的遗传模型。

背景

骨骼肌是动物的主要收缩组织,它产生运动所需的力量。收缩力的产生是由两种主要由两种最丰富的肌肉蛋白——肌动蛋白和肌球蛋白——组成的纤维的滑动而产生的[1].粗丝表面的肌球蛋白头结构域通过将主要由肌动蛋白组成的相反方向的细丝从两侧向内拉来施加力,导致收缩的基本单位肌节缩短。由于数千个肌节首尾相连,产生肌原纤维,这些肌原纤维延长了拉长的骨骼肌细胞的长度,这种力在肌细胞内纵向传递,最终传递到肌腱和骨骼,以允许运动[1].

收缩力的产生和骨骼肌的功能表现可受到收缩器官遗传缺陷的显著影响[2].ACTN3和ACE等基因突变已被证明可以改善精英力量运动员的肌肉收缩表现[3.].另外,众所周知,一些损害人类肌肉功能的致病突变会导致肌肉营养不良[45]、先天性肌病[6],以及心肌病[7].由于肌肉力量是全因死亡率的有效预测指标[8],人们对揭示改善肌肉质量的遗传基础非常感兴趣[9]和力量[2随着年龄的增长。

要了解基因突变如何影响肌肉结构和功能,最好在模式生物中进行研究[10].秀丽隐杆线虫具有整个动物运动所需的95个体壁肌肉细胞,是研究肌肉组织、组装、维持和功能的绝佳遗传模型[1112].它的肌节由密集体和m线组成,其中密集体类似于人类的z线。细丝固定在致密体上,而粗丝则围绕m线排列。肌动球蛋白收缩力通过密集体和m线的锚定传递到基底膜和角质层,它们在脊椎动物肌肉中类似于costamere的功能,是整合素粘附复合物的肌肉特异性例子[13].不像脊椎动物,收缩力在C线虫大多横向传播到角质层,导致蠕虫在琼脂表面上弯曲和弯曲运动[14].此外,在基底膜分离的相邻肌细胞边界的附着斑块上存在整合素粘附复合物[15],这些也可能参与力的传递,因为它们的缺失会导致运动缺陷[16].

保守分子通路有助于肌节结构,肌肉功能已在研究C线虫使用多种方法。动物透明的身体以及免疫染色方法和各种显微镜技术有助于可视化肌肉结构[1517181920.21].通过观察粗大的显型,如“Unc”(不协调)成人和“Pat”(2倍瘫痪骤停)胚胎致死动物,研究了由遗传缺陷引起的肌肉功能损害[1317222324].此外,颠簸和爬行试验已用于评估肌肉功能C线虫2526].尽管有这些进步,肌肉结构的紊乱,由于肌节的各种成分及其膜附着结构的遗传缺陷,如何影响肌肉功能仍然知之甚少。

最近,已经开发了一些新的方法C线虫专注于肌肉功能的定量表征,有能力检测肌肉突变体中更微妙的表型。弯曲幅度试验已用于识别肌肉黏附突变体的运动缺陷[27].光基因刺激也被用于通过监测身体面积变化来测量肌肉收缩/松弛速率常数[28].使用原子力显微镜评估动物的推力和拉力[29]和微流控装置中的柱偏转测量[30.3132已经引入了复杂的方法来计算肌肉力量C线虫.此外,表征的挖洞性能C线虫动物以3D方式移动,可以评估神经肌肉健康状况[3334].

研究已经开始采用这些新方法来解决肌肉结构和功能之间的关系C线虫.肌动蛋白丝的紊乱可能支持葡萄糖处理过的野生型动物的鞭笞力降低[32],体壁肌肉横截面的电子显微镜可以证明肌肉力低是由于密集体和m线的无序[29].然而,研究缺乏对肌肉力量和结构紊乱之间关系的系统调查,这种紊乱是由于肌节和膜附着成分的各种遗传缺陷引起的。在这里,我们利用了我们实验室最近开发的两种肌肉功能检测方法。第一个测试包括使用名为NemaFlex的基于微柱偏转的系统测量肌肉力量[31]而第二个实验则是刺激动物在电阻性凝胶介质中在三维空间中挖洞[34].我们对一组20个肌肉突变体进行了这些分析,这些突变体在不同的肌节成分中存在遗传缺陷。我们还描述了这些突变体中肌节紊乱的程度,并测试了这些测定将肌肉功能与肌肉结构相关联的能力。我们的结果强调了我们的测定方法和评分方法的适用性C线虫作为肌肉力量的遗传模型。

方法

虫文化

秀丽隐杆线虫动物在标准线虫生长培养基(NGM)上60 mm培养皿,20°C下培养,绝不让动物挨饿。在NGM板上播种大肠杆菌OP50细菌过夜。将20 - 25只妊娠动物转移到播种板上,让它们产卵约3小时,实现年龄同步。然后取出妊娠成虫,让年龄同步的鸡蛋在20°C下孵化发育,直到它们达到成年第1天,进行所有实验。成年的第0天是年龄同步的动物开始产卵的时候。

unc-22sf21),unc-94sf20),unc-98sf19)都是在Benian实验室生成的。野生型,N2(Bristol)和以下突变体秀丽遗传学中心:dyc-1cx32),pfn-3.tm1362),uig-1ok884),atn-1ok84),zyx股票-1gk190),unc-95ok893),tln-1e259),unc-82e1220),unc-89e1460),波兰-1ok1673),高山-1tm1137),昏暗的-1ra102),unc-22e66),unc-54s95),unc-54s74),列弗-11x12),unc-60r398).几乎所有这些突变体都已异交繁殖成野生型。

Pluronic凝胶法钻穴分析

按先前所述进行挖穴试验[34].简而言之,在实验前制备26% w/w Pluronic F-127 (Sigma-Aldrich)溶液并在4°C保存以防止凝胶化。在20±1°C的条件下,将至少30只动物转移到Corning™Falcon™Polystyrene 12孔板的底部,通过手工挑选将它们转移到20 - 30 μL Pluronic溶液或10 μL worm水溶液中,然后与500 μL PF-127混合制成基础凝胶层。浇铸Pluronic层至0.7 cm厚,再加20 μL 100 mg/mLE杆菌在NGM液体溶液中作为引诱剂(t= 0分钟)。每15 min记录一次钻到地表的动物数量,共持续2 h。每个品系进行3个重复。GraphPad Prism软件采用双因素方差分析(two- two ANOVA)对突变体的挖洞性能进行比较。

C线虫使用NemaFlex测量肌肉力量

肌肉力量C线虫应变测量采用NemaFlex技术,如前所述[31],这是基于动物在爬过柱子竞技场时柔软的微柱子的偏转。聚二甲基硅氧烷(PDMS)装置浇注(Sylgard 184 A部分(基础)和B部分(固化剂)按重量10:1;道康宁)在模具上固化2.5小时,在70°C。微柱器件的柱为直径为44 μm、高度为87 μm的方形晶格。立柱间距为71 μm。AutoCAD设计可在https://github.com/VanapalliLabs/NemaFlex.同步第1天成虫分别装入每个无食物室[35],然后在20±1°C下为每只动物收集1分钟的视频。采用Nikon Ti-E显微镜和Andor Zyla sCMOS 5.5相机,以5帧/秒的速度,像素分辨率为1.63 μm /像素进行明场成像。使用我们内置的图像处理软件(MATLAB, R2016a)对电影进行处理和分析,以获得强度值https://github.com/VanapalliLabs/NemaFlex).动物强度是通过在每一帧中确定柱子的最大挠度来估算所施加的最大力来计算的。我们将这些最大的力量定义为动物的肌肉力量f95,对应95th这些最大力的百分位数。我们归一化f95通过动物体径的立方来解释动物体径的差异[31].通过计算肌肉力量比,并将其表示为肌肉力量的倍数变化,将突变体的肌肉力量与WT动物进行比较。在MATLAB中使用Wilcoxon秩和检验进行统计分析。

体壁肌肉免疫染色

如前所述,固定成虫并进行免疫染色[3637].使用以下一抗:抗atn -1(小鼠单克隆MH35 [19];由西密歇根大学Pamela Hoppe博士提供)和抗肌凝蛋白重链A (MHC A;小鼠单克隆5-6 [38];从爱荷华大学杂交瘤库购买)以1:200稀释,抗unc -89(兔多克隆EU30) [39])和抗unc -95(兔多克隆Benian-13 [40])以1:100稀释。二抗包括抗兔Alexa 488 (Invitrogen)和抗小鼠Alexa 594 (Invitrogen),均按1:200稀释。罗丹明-phalloidin对细丝进行染色,如所述[41].使用蔡司共焦系统(LSM510), Axiovert 100M显微镜和Apochromat 63×/1.4数值孔径油浸物镜,2.5×变焦模式,在室温下拍摄图像。使用Adobe Photoshop (Adobe, San Jose, CA)调整图像的颜色平衡。

肌肉紊乱得分计算

本研究(不包括其他研究)使用相同的免疫染色方法和抗体,对免疫染色结果进行评估,得出肌肉紊乱评分。此外,评分由两名研究人员独立执行,所呈现的图像是来自每个菌株10只蠕虫的代表性示例据报道,两位不同观察者对肌节紊乱的差异的变异系数小于15% [42].

结果

肌肉突变体的选择和肌肉功能的预先评估

目的:探讨老年人肌肉结构与功能的关系C线虫,我们选择了18个肌肉蛋白(图;1).这种选择是基于(i)位于肌节不同结构成分的蛋白质,(ii)先前在运动方面已被描述的突变体(表2)1), (iii)这些蛋白质是参与肌肉力量的产生还是传递。在参与力产生的蛋白方面,我们选择了2个与粗丝相关的蛋白(UNC-22和UNC-54);以及三种与细丝相关的蛋白质(LEV-11、UNC-60和UNC-94)。在力传递方面,我们选择了6个定位于密集体的蛋白(UIG-1、DYC-1、PFN-3、ATN-1、ALP-1和din -1)和3个定位于m系的蛋白(UNC-82、UNC-89、UNC-98)。我们还选择了4个同时定位于密体和m系的蛋白(ZYX-1, TLN-1, UNC-95, PKN-1)。尽管我们的选择是有限的,针对肌节的各种结构单位提供了这些蛋白质在肌肉功能中的作用的初步评估。

图1
图1

C线虫肌节突出了肌节的各种结构成分。肌肉突变体是根据肌肉5个不同结构位点的蛋白质编码基因来选择的:细丝、粗丝、m线、密体,以及密体和m线同时存在

表1所研究突变体的摘要,及其人类同源物、蛋白质定位和报告的行为表型

表格1显示了编码所选蛋白质的基因列表,所选的特定突变等位基因,蛋白质人类同源的指示,在肌节中的位置,以及文献中报道的运动测定的表型信息。对于两个基因,unc-54,编码体壁肌肉粗丝的主要肌球蛋白重链,以及unc-60,编码ADF/cofilin,我们选择研究轻度等位基因,因为任何一种的零状态都会导致严重的瘫痪。

所编译的表型包括来自弯曲试验的最大弯曲幅度[27],以及根据标准游泳和爬行测试评估的运动速率。通过分析数据,我们发现属于m -系和密体的突变体和m -系的突变体表现出缓慢的爬行或游泳运动(表1),除了unc-98sf19)显示正常爬行,但游泳时动作较慢。相反,在粗体、粗丝和细丝突变体中观察到混合表型。一些突变体在爬行或游泳测试中没有表现出任何明显的缺陷,一些突变体甚至比野生型(WT)动物表现得更好。突变体uig-1dyc-1昏暗的-1,列弗-11只在爬行和unc-22sf21)在两种测试中都更快。另一方面,弯曲试验确定了6个突变体在弯曲方面有缺陷(zyx股票-1unc-95pfn-3.atn-1高山-1昏暗的-1)和2个正常(unc-98uig-1).有趣的是,这两个tln-1而且dyc-1表现出夸张的身体弯曲;然而,他们的运动速度是不同的tln-1慢慢地爬行,dyc-1爬得更快。

肌肉节的遗传缺陷可以减少C线虫肌肉力量和挖洞能力

由于这些蛋白在肌节中的定位和已知功能,预计与WT相比,它们相应的功能丧失突变体将表现出肌肉无力。然而,表中所列的运动试验都没有1适用于测量肌肉力量。在此之前,NemaFlex测试被用于显示肌肉无力unc-17e245),unc-52e669),unc-112r367ts的多个等位基因unc-893149].在这里,我们利用NemaFlex平台来测量表中列出的更多肌肉突变体的强度1.由于一些突变体的体径与WT相比有显著差异(见SI表)S1),我们用身体直径的立方归一化肌肉力量。这种归一化以前被证明可以很好地解释体直径的影响[31],它也适用于这里研究的肌肉突变体(见SI图)S1).

在无花果。2B,我们显示测试突变体的归一化强度数据。我们发现,除了在细丝、粗丝和m系上有缺陷外,其余突变体均弱于WTlev-11x12),unc-22sf21),unc-54s74),unc-98sf19).在密体和m系均有遗传缺陷的动物与野生型相比均无显著差异unc - 95su33).最后,在密集体中存在遗传缺陷的6个突变体中,有4个突变体没有表现出差异,而另外2个突变体比WT弱。此外,我们发现在20个测试突变体中,unc-95是最弱的。

图2
图2

肌肉突变体的NemaFlex强度测量。一个一只动物正在NemaFlex房间里爬行,并使柱子偏转。红色柱子与蠕虫体接触,由于肌肉力而发生偏转。绿色柱子具有动物施加的最大偏转或最大力。B与野生型动物相比,突变体归一化肌肉力量的倍增变化。参见“材料和方法”部分,从最大支柱力和归一化估计肌肉力量。误差条表示平均值的标准误差。显著性水平采用Wilcoxon秩和检验,*P≤0.05,**P≤0.01,***P≤0.001。样本量如下:WT的平均样本量(N) 30岁。N= 36, 30, 26, 25, 31, 29 fordyc-1uig-1pfn-3.昏暗的-1atn-1.N= 20,25,34,20 forzyx股票-1波兰-1tln-1unc-95N= 27,29,31 forunc-98unc-82unc-89N= 36,34,26,31 forunc-54s74),unc-54s95),unc-22sf21),unc-22e66).N= 27,23,27 for列弗-11unc-94unc-60

图的结果。2结果表明,20个肌肉基因中有9个与肌肉力量有关,9个基因中有6个属于m系(粗丝和细丝)的遗传缺陷。看来,这些肌节成分的遗传缺陷可能会导致更严重的肌肉力量损失,因此,该试验可以检测这些结构中每一种遗传缺陷的生理后果。有趣的是,稠密体的3个分量的零突变(uig-1pfn-3.高山-1)与其他结构的轻微突变相比,每一种都不会导致严重的缺陷。因此,就强度生产而言,致密体似乎更能抵御单个组件的损失。这一建议与过去的观察相一致,即正常肌节结构所需的高密度体蛋白比肌肉代谢稳态所需的更少[24].

作为对NemaFlex实验的补充,我们还在穴居环境中测试了突变体C线虫可能会因为三维运动而受到不同的挑战[5556].在挖洞实验中,突变体被装载在孔板的底部,然后刺激其通过Pluronic凝胶向顶部的引诱剂挖洞(图。3.a).每隔15分钟计算能到达顶部的动物的百分比,总持续时间为2小时[34].

图3
图3

肌肉突变体的挖洞性能。一个在Pluronic凝胶挖洞实验中,动物被装在孔板的底部,并被刺激向顶部的引诱剂(黄色部分)挖洞。B- - - - - -D通过测定2小时内在顶部的动物比例来评估挖洞性能。突变体位于上节肌节的基因存在遗传缺陷B密集的身体,C密体和m线,Dm线,E粗丝,和F薄丝。样本量如下:BN= 30-44 WT, 31-40dyc -1,31 - 43为uig -1,45 - 54为alp-1, 29-39分pfn-3, 41比48赞成dim-1, 29-40分atn-1。CN= 32-41 WT, 30-35zyx股票- - - - - -1、35-40为宜tln-1, 33-36为unc-95.DN= 33-41为WT, 26-39为unc-98, 41-45unc-8228-41分unc - 89EN= 45-49 WT, 39-56unc-54s74), 44比50赞成unc-22sf21), 41-52票赞成unc-54s95), 39-58unc-22e66),FN= 40-48为WT, 31-35为列弗- 11,30 - 35为unc-94, 34-43为unc-60.每个菌株至少进行3个重复。误差条是平均值的标准误差。采用双因素方差分析评估显著性水平

以前使用的钻洞试验表明,4个密体和3个密体和m系蛋白突变体的钻洞效果不如WT [34],这使得我们用这种方法评估了其他的肌肉突变体。如图所示。3.B-f,我们发现大多数肌肉突变体都不能像野生型那样有效地挖洞,除了unc-98sf19).在存在缺陷的结构构件中,挖洞性能与缺陷之间没有明显的相关性。有趣的是,没有一个atn-1ok84),unc-95su33),unc-60r398)动物可以到达最上面的引诱剂,使它们成为最差的钻洞者,其次是unc-22e66),unc-94sf20),其中只有2%和7%的动物达到引诱剂(图。3.b)。

我们之前已经证明,这种钻洞试验不仅仅是一种趋化性试验,事实上,由于钻洞性能随凝胶硬度和高度的变化而变化,因此它涉及肌肉的运动[34].此外,在二维趋化性方面没有缺陷的突变体(参考文献图6c [34])显示出挖洞不足,表明肌肉在3D运动过程中驱动不同,提供了比2D趋化性测定更多的肌肉功能信息。这也在这项研究中得到了证实,通过测试已知有不协调运动的Unc突变体;然而,在二维趋化性试验中,两者均无unc-22而且unc-54突变体有任何明显的损害,以控制他们的运动向细菌在2D(图S2),但它们在挖洞实验中都有缺陷。

总的来说,NemaFlex和挖穴试验都能反映肌肉功能C线虫并强调肌肉中的遗传缺陷会导致肌肉性能下降。

挖洞和NemaFlex强度测量的功能是不同的

为了开发一种结合NemaFlex读数和钻穴测定的肌肉功能的整体测量方法,我们首先考虑这两种测定的读数是否报告了肌肉功能的不同方面。所产生的火车头力C线虫在由可变形的微柱组成的机械环境中进行二维运动时,预计与在挖洞过程中进行三维机动时产生的不同,这表明这些分析可能报告了肌肉功能的独特方面。事实上,我们最近表明,从NemaFlex提取的测量值和WT动物的穴居测量值彼此并不相关[56].在这里,我们试图解决肌肉突变体是否存在这种相关性。此外,我们有兴趣检查是否存在基于受突变影响的肌节中蛋白质的已知位置的数据聚类。

我们计算了z分数\({Z}_j=\frac{\mu_j-{\mu}_{WT}}{\sigma_{WT}} \)对于从NemaFlex和穴居分析中提取的每一项功能测量的野生型种群。在这里μ是测量的平均值,在我们的例子中是标准化肌肉力量(来自NemaFlex试验)或在2小时时间点到达地面的动物百分比(来自挖洞试验),下标j表示一个给定的突变株。同样的,μWT而且μWT为WT动物测量值的平均值和标准误差。因此,Z-score为0表明突变体的肌肉功能测量与WT相同。

在无花果。4,我们显示了所有测试突变体的挖洞和NemaFlex分析的z分数。在前一节中,我们展示了unc-95atn-1unc-60unc-22e66),unc-94是最差的挖洞者。因此,所有这些突变体都在图的最左边。4;然而,他们的NemaFlex强度测量值不同Z≈−3unc-60,在NemaFlex和穴居实验中最弱的突变体,unc-95,Z≈−8另一方面,dyc-1uig-1高山-1pfn-3.zyx股票-1波兰-1tln-1unc-98unc-54s74),unc-22sf21),列弗-11在强度测量上与WT无显著差异的区域位于图的右上方。4z分数在−19之间的较大范围unc-22sf21)到−4.8unc-98.这表明,在挖洞实验中,肌肉功能受损更为明显。总的来说,这一数据表明这两个测试具有一定的相关性(Spearman相关系数为0.42),这是预期的,因为它们都涉及肌肉的驱动,但鉴于它们不完全相关,也表明它们可以告知肌肉生理学的不同方面。我们也没有发现任何基于受影响蛋白质位置的聚类证据。

图4
图4

挖洞试验与NemaFlex强度测量相关性不强。Z-score为0表示与WT相同。突变体根据蛋白质在肌节中的位置进行颜色编码

结构混乱的评分系统C线虫肌肉

肌节的结构紊乱会对收缩-松弛周期产生不利影响,从而干扰肌肉功能。随着NemaFlex和挖洞试验的进行C线虫在驱动其肌肉时,我们推测在至少一项测定中z评分较低的突变体可能表现出一定程度的肌节结构紊乱。因此,我们进行免疫染色以可视化突变体肌肉收缩器官的结构紊乱,并开发了一个评分系统来对紊乱水平进行排名。

密体、m线、a带和i带是肌节的主要亚结构,肌节是肌肉收缩的基本单位。因此,我们通过对以下蛋白质的抗体免疫染色来评估这些部位的肌肉组织:MHCA(肌凝蛋白重链A),位于A带中间,代表组装和有组织的肌凝蛋白粗丝,UNC-95位于密集体和m线的底部,UNC-89位于m线的整个深度,ATN-1位于密集体的主要部分而不是基础部分。Phalloidin也用于肌动蛋白细丝所在的i带染色。我们还调查了文献,并收集了本研究中使用的相同等位基因的上述肌肉结构的图像。表格2显示了20个突变体的肌肉结构数据,其中69个数据点来自本研究,36个数据点来自文献。本研究获得的突变体免疫染色图像见SI图S3

表2肌肉紊乱评分(MDS)。根据组织紊乱的严重程度,每个结构部位都被给予了0到3分的评分。突变体的MDS是每个位点上这些分数的总和。左图为肌肉结构正常的WT, MDS = 0,此值为14unc-60r398),因为它的肌肉组织紊乱严重。从文献中收集的肌肉结构数据(见引用文献)和未发表的(unpub)数据也包括在表格中

根据每个染色结构的结构紊乱水平对突变体进行评估,并将正常到最严重的紊乱分配为0到3分(表2)2).肌肉无序得分(MDS)定义为每个个体结构无序得分的总和。一个突变体可以获得一个从0(有组织的结构)到最大15(严重无序的肌肉结构)的值。表的左面板2说明了如何计算MDS的两个例子:WT动物或对照组的MDS = 0,因为所研究的结构都没有紊乱unc-60r398),由于在i -带、a -带、m -线和密体深度处观察到较严重的结构无序,密体和m -线底部有中度无序,因此MDS = 14。

对于突变体,我们没有观察到任何无序zyx股票-1波兰-1unc-22sf21)体壁肌肉结构(表2).有趣的是,在NemaFlex强度测量中,这些突变体都没有变弱,但它们都有挖洞能力受损。同样,在NemaFlex和挖洞中z值都较低的突变体如图左下角所示。4肌肉结构紊乱;即MDS ofunc-95而且unc-22e66)分别为15例及10例。在下一节中,我们将使用这个评分系统来了解肌肉结构和肌肉功能之间的关系。

肌肉功能与肌肉结构紊乱的关系

为了了解肌丝晶格的结构组织如何有助于肌肉功能,我们寻求一个功能读数表征肌肉生理学。由于NemaFlex和挖洞z分数值不在同一范围内,我们将它们归一化,使其相对于绝对最大值,从而归一化z分数\({\overline{Z}}_j \)躺在射程内\(-1<{\overline{Z}}_j<0 \).在无花果。5a和b,我们将标准化的NemaFlex和挖洞得分作为肌肉紊乱得分的函数绘制。总体而言,NemaFlex和穴居评分均随肌肉结构紊乱评分的增加而降低。主成分分析(PCA)表明,将归一化NemaFlex和具有几乎相同权重的掘穴z分数相加,可以产生一个新的潜在变量,我们称之为肌肉功能分数,它可以解释80%的数据变化(见SI注)S1).数字5c表明,与每个个体的生理z评分相比,使用这种新的肌肉功能的相关性得到了改善。有趣的是,所有数据点都落在拟合线的95%预测范围内。总的来说,这些结果表明,肌肉功能评分越低,肌肉组织紊乱的程度越大,这表明这两种肌肉生理学检测结合起来可以提高成功检测动物体壁肌肉结构紊乱的机会。

图5
图5

肌肉功能评分与肌肉紊乱评分相关。一个BNemaFlex和Burrowing Z-score值的线性回归显示r平方分别为0.61和0.49。C肌肉功能评分是来自NemaFlex和穴居测试的缩放z评分的总和。黑线表示线性回归拟合r平方为0.68,95%的预测边界以虚线表示

此外,无花果。5c表明所有m系和粗丝突变体的肌肉结构轻度紊乱,生理功能混杂。密体突变体的肌肉结构从接近正常值到轻度紊乱,生理功能也从正常到轻度。大多数密体和m系突变体的肌肉结构几乎组织良好,生理性能正常,除了unc-95在结构上和生理上都严重受损。对于有细丝缺陷的突变体,肌肉结构紊乱和肌肉功能从轻微到严重不等。

讨论

新方法推进了肌肉功能的研究C线虫

我们的结果证明了两种新颖的检测方法——nemaflex和burrows——在检测功能性缺陷方面的有效性秀丽隐杆线虫肌肉的突变体。此外,我们的结果表明,每一种分析都反映了肌肉生理学的不同方面。因此,在其中进行分析C线虫在2D和3D环境中测量的反应可以提供关于肌肉功能的独特信息。

NemaFlex和穴居检测均显示,20个突变体中有9个存在缺陷。这包括昏暗的-1而且atn-1由于致密体中存在缺陷,unc-95密体和m线有缺陷,unc-82而且unc-89m线有缺陷unc-54s95),unc-22e66)有粗丝缺陷,以及unc-94而且unc-60细丝中存在缺陷(图。2而且3.).除了这些突变体,还有10个突变体只是挖洞受损。这表明,在具有NemaFlex检测不到的微妙遗传缺陷的显型肌肉突变体中,钻洞试验具有更大的带宽。

比较游泳或爬行的标准运动测试结果,我们观察到在20个肌肉突变体中,除了4个突变体uig-1dyc-1unc-22sf21),列弗-11x12),其余的则在爬行或游泳方面有缺陷(表1).在发现的20个肌肉突变体中,有9个在NemaFlex和挖洞方面都有缺陷,在游泳或爬行方面也有缺陷。有趣的是,这四个突变体在爬行或游泳实验中表现出快速表型(uig-1dyc-1unc-22sf21),列弗-11x12)),但没有人在NemaFlex肌肉力量评估中表现较弱。

总的来说,将NemaFlex和穴居试验的结果与传统的游泳和爬行试验的结果进行比较,表明所有这些试验的共同缺陷主要与2个突变体的m线相关蛋白的突变有关,1个突变体的密体和m线相关蛋白的突变,2个突变体的粗丝和细丝相关蛋白的突变有关。在密集体突变体中发现了混合表型,因为在atn-1而且昏暗的-1游泳和爬行测试,但两者都在NemaFlex和穴居测试中受损。

将肌肉功能与肌肉结构联系起来

我们研究了肌肉结构有遗传缺陷的突变体,目的是将肌节的结构紊乱与肌肉功能联系起来。我们建立了一个评分系统,通过免疫染色关键肌肉结构成分(包括密集体、m线、a带和i带)来评估肌肉结构紊乱。我们还通过结合NemaFlex和挖洞实验的输出,开发了肌肉功能评分,结果受损最严重的动物得分在- 2之间,生理上与WT相似的动物得分为0。

我们的结果表明,肌肉功能评分与肌肉紊乱评分呈负相关(图2)。5c)。Unc-95unc-60unc-89unc-82,unc-22e66)为体壁肌肉无序度最高的突变体,其肌肉无序度评分分别为15、14、11、10、10。这些突变体可以在图的右下方找到。5C,与低肌肉功能评分相关,证明他们的肌肉功能受损。有趣的是,atn-1而且unc-94被发现有生理损伤(在最低- 2分中得分为~ - 1.5),但他们的肌肉结构只是轻度紊乱。

突变体zyx-1波兰-1unc-22sf21)的肌肉组织紊乱得分为0,并且dyc-1高山-1tln-1,列弗-11得分为1,说明肌肉功能得分高。这些肌肉突变体没有表现出更严重的肌肉紊乱的原因可能是因为,除了高山-1突变体是一个空突变体,所采用的突变体并不完全消除其基因产物。事实上,零状态列弗-11是Pat胚胎致死。或者,这可能是由于我们的抗体染色的特定蛋白质位置,而突变导致我们感兴趣的蛋白质共定位的另一个区域的肌肉紊乱。例如,在这里,我们使用ATN-1来可视化密集天体的深度zyx股票-1然而,据报道,ZYX-1蛋白定位于致密体的中间,也可能部分存在于致密体的基底区,DEB-1 (vinculin)所在[57].此外,已知DYC-1定位于致密体的边缘,而DEB-1可能是一个更好的候选对象,以观察其中是否存在任何无序dyc-1动物(46].有趣的是,尽管DYC-1定位于致密体附近,但我们只观察到m线的轻度紊乱dyc-1突变体。

unc-22sf21)是肌肉组织完全正常的突变体之一,如先前报道[51].sf21是一种错义突变,使抽搐激酶结构域的催化活性失活,但表达正常水平的完整巨蛋白,抽搐。unc-22sf21)突变体移动得更快,这表明抽搐激酶活性的正常功能是抑制肌肉活动[51].在这里,我们看到,尽管它们发挥了与WT相同的肌肉力量,但挖洞性能受到了轻度损害。一种可能性是,这种受损的挖洞反映了抽搐激酶在3D中的功能,而不是2D运动(例如,对环境的力感)。有趣的是,这种肌肉的功能和结构组织是截然相反的unc-22等位基因,e66我们测试的,它的肌节结构高度紊乱,肌肉力量较弱,并且在钻洞中受到严重损害。e66是由于2 bp的缺失导致帧移位和过早停止密码子而导致的功能等位基因的强烈损失[51].之前有人认为抽搐在肌肉中起着调节和结构作用,我们的研究结果进一步证明了这一观点。1351].

列弗-11编码原肌凝蛋白和列弗-11x12)是另一个肌肉结构紊乱得分很低的突变体,为1分,有轻微的钻洞损伤,强度与WT相同。这些结果也是可以预期的,因为原肌凝蛋白在肌动蛋白-肌凝蛋白相互作用中的调节作用[58].这种突变没有导致明显的结构紊乱;然而,到目前为止,钻洞试验是唯一可以检测到这种调节障碍的运动试验。

C线虫作为肌肉力量的遗传模型

肌肉力量在日常活动和锻炼中的作用是无可争辩的。一些研究已经调查了它在骨骼健康中的重要性[59]及其与肌肉减少症的关系[60]、心脏病[61],以及总死亡率[8].由于单个肌肉纤维的大小和数量减少而引起的与年龄有关的肌肉大小和力量的丧失[62]与观察到的老年人身体越来越虚弱有关[63].鉴于人口老龄化对医疗保健系统的经济影响[64,现在比以往任何时候都更有必要研究肌肉力量的遗传基础。

自体壁肌肉起C线虫在功能和结构上是否与人类骨骼肌和大多数肌肉基因相似秀丽隐杆线虫都有人类同源,我们的研究结果强调了这一点C线虫可以用作研究肌肉力量遗传的模式生物。此外,C线虫是肌肉老化(又名肌肉减少症)的既定模型[42656667].我们对钻洞和NemaFlex的生理分析可以有效地评估肌肉结构有遗传缺陷的突变体的肌肉功能。通过发展肌肉功能和肌肉紊乱C线虫,我们显示了两者之间的强相关性,这表明突变体获得的肌肉功能得分越低,其结构紊乱程度越高。这一结果具有重要意义,因为通过利用正向和反向遗传筛选,肌肉生理和肌肉结构都可以评估C线虫找出肌肉力量的基因。我们认为肌肉功能评分是进行此类调查的一种有价值的手段。

结论

我们的结果表明,NemaFlex和挖穴试验适合于描述肌肉功能C线虫.使用这些测试方法,我们讨论了所研究的肌节蛋白对肌肉功能和结构的重要性。我们已经证明,Pluronic凝胶钻洞试验和NemaFlex报告了肌肉生理学的不同方面,由于它们的3D和2D性质,刺激和非刺激实验条件,钻洞试验在解剖肌肉功能缺陷方面具有更高的敏感性。有趣的是,当这两种检测相结合时,它们可以提供更多关于肌肉功能和结构组织的信息。因此,我们开发的综合评分方法可以进一步评估C线虫作为肌肉生理学的遗传模型,以确定负责人类肌肉力量的保守基因。

数据和材料的可用性

在本研究过程中产生或分析的所有数据都包含在本文及其补充信息文件中。本研究中使用的视频文件和图像可根据合理要求从通讯作者处获得。

参考文献

  1. 骨肌:结构和功能的简要回顾。国际钙化组织。2015, 96(3): 183 - 95。https://doi.org/10.1007/s00223-014-9915-y

    文章中科院PubMed谷歌学者

  2. Tikkanen E, Gustafsson S, Amar D, Shcherbina A, Waggott D, Ashley EA,等。肌肉力量的生物学见解:英国生物库的遗传发现。科学通报2018;8(1):1 - 9。

    文章中科院谷歌学者

  3. Papadimitriou ID, Lucia A, Pitsiladis YP, Pushkarev VP, Dyatlov DA, Orekhov EF,等。ACTN3 R577X和ACE I/D基因变异对优秀短跑运动员成绩的影响:一项多队列研究BMC基因组学杂志,2016;17(1):285。https://doi.org/10.1186/s12864-016-2462-3

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  4. 柯林斯,Bönnemann CG。先天性肌营养不良:分子治疗干预。中华神经科学杂志,2010;10(2):83-91。https://doi.org/10.1007/s11910-010-0092-8

    文章中科院PubMed谷歌学者

  5. 高QQ, McNally EM.肌萎缩蛋白复合体:结构、功能和治疗意义。综合物理,2011;5(3):1223-39。

    谷歌学者

  6. 与骨骼肌病相关的细丝蛋白突变:肌肉收缩调节缺陷。中华分子医学杂志,2008;26(4):344 - 344。https://doi.org/10.1007/s00109-008-0380-9

    文章中科院PubMed谷歌学者

  7. 张志刚,张志刚。心肌病的遗传学基础:从突变鉴定到机制范式。细胞。2001;104(4):557 - 67。https://doi.org/10.1016/s0092 - 8674 (01) 00242 - 2

    文章中科院PubMed谷歌学者

  8. García-Hermoso A, Cavero-Redondo I, Ramírez-Vélez R, Ruiz JR, Ortega FB, Lee D-C,等。肌肉力量作为明显健康人群全因死亡率的预测指标:对大约200万男性和女性数据的系统回顾和荟萃分析。中国临床医学杂志。2018;99(10):2100-13。e5。

    文章PubMed谷歌学者

  9. 张志强,张志强,张志强,等。全基因组关联研究的大型元分析确定了瘦体重的五个位点。地理学报。2017;8(1):1 - 13。

    文章谷歌学者

  10. 克拉克KA,麦克尔hinny AS, Beckerle MC, Gregorio CC.横纹肌细胞结构:复杂的形式和功能网络。细胞发育生物学杂志,2002;18(1):637-706。https://doi.org/10.1146/annurev.cellbio.18.012502.105840

    文章中科院谷歌学者

  11. 雪橇J,卫星D。秀丽隐杆线虫神经肌肉疾病模型加速转化研究。神经科学,2010;1(3):214-27。

    文章谷歌学者

  12. Benian GM, Epstein HF。秀丽隐杆线虫肌肉。法令2011;109(9):1082-95。https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.110.237685

    文章中科院谷歌学者

  13. Gieseler K, Qadota H, Benian G.开发,结构和维护秀丽隐杆线虫体壁肌肉。入职:WormBook,编辑。施普林格科学+商业媒体有限责任公司:TheC线虫研究社区;2017.p。1。

  14. 阿尔金Z,霍尔d,肌肉系统,体肌。: WormAtlas;2009.

    谷歌学者

  15. Qadota H, Matsunaga Y, Nguyen KC, Mattheyses A, Hall DH, Benian GM.线虫肌肉附着结构的高分辨率成像。细胞骨架。2017;74:426-42。

    文章中科院PubMed谷歌学者

  16. 穆迪JC, Qadota H, Reedy AR, Okafor CD, Shanmugan N, Matsunaga Y,等。Rho-GEF PIX-1指导肌肉细胞之间横向附着结构的组装或稳定性。网络学报。2020;11(1):1 - 15。https://doi.org/10.1038/s41467-020-18852-4

    文章中科院谷歌学者

  17. Waterston RH, Thomson JN, Brenner S.在秀丽隐杆线虫肌肉结构改变的突变体。中国生物医学工程学报,2000;26(2):379 - 379。https://doi.org/10.1016/0012 - 1606 (80) 90475 - 3

    文章中科院PubMed谷歌学者

  18. 弗朗西斯GR,沃特斯顿RH。秀丽隐杆线虫的肌肉组织:涉及细丝附着和i -带组织的蛋白质定位。中国生物医学工程学报,2005;29(4):344 - 344。https://doi.org/10.1083/jcb.101.4.1532

    文章中科院PubMed谷歌学者

  19. 弗朗西斯R,沃特斯顿RH。秀丽隐杆线虫的肌细胞附着。中国生物医学工程学报,2001;29(3):344 - 344。https://doi.org/10.1083/jcb.114.3.465

    文章中科院PubMed谷歌学者

  20. Forbes JG, Flaherty DB, Ma K, Qadota H, Benian GM, Wang K.秀丽隐杆线虫TTN-1的广泛和模块的内在无序片段及其在丝结合、弹性和斜条纹中的意义。中华分子生物学杂志,2010;39(5):672-89。https://doi.org/10.1016/j.jmb.2010.03.032

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  21. Matsunaga Y, Qadota H, Furukawa M, Choe H, Benian GM. Twitchin激酶与秀丽隐杆线虫横纹肌MAPKAP激酶2相互作用。Mol Biol Cell, 2015;26(11): 2096-111。https://doi.org/10.1091/mbc.E14-05-1009

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  22. 曾格尔JM,爱泼斯坦HF。与线虫肌肉结构相关的遗传元件的鉴定秀丽隐杆线虫.中国生物医学工程学报,1980;1(1):73-97。https://doi.org/10.1002/cm.970010107

    文章中科院PubMed谷歌学者

  23. Williams BD, Waterston RH。通过致命突变确定了秀丽隐杆线虫肌肉发育和功能的关键基因。中国生物医学工程学报,1994;29(4):379 - 379。https://doi.org/10.1083/jcb.124.4.475

    文章中科院PubMed谷歌学者

  24. 埃瑟里奇T, Rahman M, Gaffney CJ, Shaw D, Shephard F, Magudia J,等。整合素-粘连体是维持肌肉结构、线粒体ATP生成和运动力所必需的秀丽隐杆线虫.中国科学d辑,2015;29(4):1235-46。https://doi.org/10.1096/fj.14-259119

    文章中科院PubMed谷歌学者

  25. 哈特AC.行为。入职:WormBook,编辑。的C线虫研究社区;2006.

    谷歌学者

  26. 加夫尼CJ,巴斯JJ,巴拉特TF, Szewczyk NJ。评估肌肉亚细胞间室的方法秀丽隐杆线虫.木星。2014; 93: e52043。

    谷歌学者

  27. 李志强,李志强,李志强,李志强。一种新的定量分析方法秀丽隐杆线虫运动:在编码肌肉黏附成分的基因突变的表型鉴定。方法。2012;56(1):95 - 102。https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2011.11.005

    文章中科院PubMed谷歌学者

  28. 黄H, Barnes DE, Matsunaga Y, Benian GM, Ono S, Lu H.利用光遗传学技术进行肌肉收缩表型分析,揭示肌节成分的功能关系秀丽隐杆线虫.科学通报2016;6(1):19900。https://doi.org/10.1038/srep19900

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  29. Várkuti BH, Yang Z, Kintses B, Erdélyi P, Bárdos-Nagy I, Kovács AL,等。肌肉有效收缩所需要的肌凝蛋白的一种新的肌动蛋白结合位点。分子结构与分子生物学。2012;19(3):299-306。https://doi.org/10.1038/nsmb.2216

    文章中科院PubMed谷歌学者

  30. Johari S, Nock V, Alkaisi MM,王伟秀丽隐杆线虫微结构环境中的肌肉力量和运动模式。实验室芯片。2013;13(9):1699-707。https://doi.org/10.1039/c3lc41403e

    文章中科院PubMed谷歌学者

  31. 张志刚,张志刚,张志刚,等。NemaFlex:一种基于微流体技术的肌肉力量标准化测量秀丽隐杆线虫.实验室芯片。2018;18(15):2187-201。https://doi.org/10.1039/C8LC00103K

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  32. 苏斐拉,萨鲁尔,斯塔布斯,奥罗扎利耶夫,雷菲,艾斯玛尔,等。使用弹性微柱阵列对部分固定的秀丽隐杆线虫施加的鞭笞力的表型分析。实验室芯片。2019;19(21):3685-96。https://doi.org/10.1039/C9LC00660E

    文章中科院PubMed谷歌学者

  33. 黄志刚,黄志刚,黄志刚。线虫的挖洞行为秀丽隐杆线虫:一种研究神经肌肉疾病的新方法。中国生物医学工程学报,2015;14(4):357-68。https://doi.org/10.1111/gbb.12217

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  34. Lesanpezeshki L, Hewitt JE, Laranjeiro R, Antebi A, Driscoll M, Szewczyk NJ,等。Pluronic凝胶挖穴试验用于快速评估神经肌肉健康秀丽隐杆线虫.科学通报2019;9(1):15246。

    文章PubMed公共医学中心谷歌学者

  35. Hewitt JE, Pollard AK, Lesanpezeshki L, Deane CS, Gaffney CJ, Etheridge T,等。肌肉萎缩模型中的肌肉力量不足和线粒体功能障碍秀丽隐杆线虫以及对药物的功能性反应。机械工程学报。2018;11(12):dmm036137。

    文章中科院谷歌学者

  36. 李志强,李志强,李志强。突触功能受损,但未消除秀丽隐杆线虫突变体缺乏synaptotagmin。细胞。1993;73(7):1291 - 305。https://doi.org/10.1016/0092 - 8674 (93) 90357 - v

    文章中科院PubMed谷歌学者

  37. 王志强,王志强,王志强,等。免疫荧光技术在蛋白质定位中的应用秀丽隐杆线虫肌肉。In:肌生成:施普林格;2012.p . 171 - 81。

  38. 米勒DM III,奥尔蒂斯I,柏林GC,爱泼斯坦HF。线虫粗丝中两种肌球蛋白的差异定位。34细胞。1983;(2):477 - 90。https://doi.org/10.1016/0092 - 8674 (83) 90381 - 1

    文章中科院PubMed谷歌学者

  39. Benian GM, Tinley TL, Tang X, Borodovsky M.秀丽隐杆线虫基因unc-89需要fpr肌肉m线组装,编码一个由Ig和信号转导结构域组成的巨大模块蛋白。中国生物医学工程学报。1996;32(5):339 - 344。https://doi.org/10.1083/jcb.132.5.835

    文章中科院PubMed谷歌学者

  40. Qadota H, Mercer KB, Miller RK, Kaibuchi K, Benian GM.两个LIM结构域蛋白和UNC-96将UNC-97/pinch连接到秀丽隐杆线虫肌肉中的肌球蛋白粗丝。Mol生物细胞,2007;18(11):4317-26。https://doi.org/10.1091/mbc.e07-03-0278

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  41. 秀丽隐杆线虫unc-78基因编码肌动蛋白相互作用蛋白1的同源物,这是肌肉肌动蛋白丝有组织组装所必需的。中国生物医学工程学报,2001;26(6):326 - 326。https://doi.org/10.1083/jcb.152.6.1313

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  42. Gaffney CJ, Pollard A, Barratt TF, Constantin-Teodosiu D, Greenhaff PL, Szewczyk NJ。在秀丽隐杆线虫中,随着年龄的增长,线粒体功能的更大损失与肌肉减少症的早发有关。衰老。2018;10(11):3382。

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  43. Polet D, Lambrechts A, Ono K, Mah A, Peelman F, Vandekerckhove J,等。秀丽隐杆线虫以组织特异性的方式表达三种功能基因。中国生物医学工程学报。2006;29(1):344 - 344。https://doi.org/10.1002/cm.20102

    文章中科院谷歌学者

  44. Moulder GL, Cremona GH, Duerr J, Stirman JN, Fields SD, Martin W,等。α-肌动蛋白是z盘/病灶粘连样结构正确组装和有效运动的必要条件秀丽隐杆线虫.中华分子生物学杂志,2010;403(4):516-28。https://doi.org/10.1016/j.jmb.2010.08.055

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  45. 韩海峰,Beckerle MC. ALP-Enigma蛋白ALP-1在秀丽隐杆线虫肌动蛋白丝组织中促进肌肉结构完整性的作用。分子生物学杂志,2009;20(9):2361-70。https://doi.org/10.1091/mbc.e08-06-0584

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  46. 李志强,李志强,李志强,等。DYC-1,一种与肌营养不良蛋白功能相关的蛋白质秀丽隐杆线虫与密集体相关,在那里它与肌肉LIM结构域蛋白ZYX-1相互作用。Mol Biol Cell, 2008;19(3): 785-96。https://doi.org/10.1091/mbc.e07-05-0497

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  47. 秀丽隐杆线虫的遗传学。遗传学。1974;77(1):71 - 94。https://doi.org/10.1093/genetics/77.1.71

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  48. 王志刚,王志刚,王志刚,王志刚,等。PKN-1是哺乳动物PKN的同源物,参与秀丽隐杆线虫肌肉收缩和力传递的调节。中华分子生物学杂志,2011;https://doi.org/10.1016/j.jmb.2011.01.039

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  49. 王志强,王志强,王志强,等。位于两个蛋白激酶结构域之间的UNC-89 (Obscurin)区域是正常肌节组织所需的高弹性弹簧。中国生物医学工程学报,2020;https://doi.org/10.1016/j.jmb.2020.06.024

    文章中科院PubMed谷歌学者

  50. Mercer KB, Flaherty DB, Miller RK, Qadota H, Tinley TL, Moerman DG,等。秀丽隐杆线虫UNC-98是一种C2H2锌指蛋白,是UNC-97/PINCH在肌肉粘连复合物中的新伙伴。Mol Biol Cell, 2003;14(6): 2492-507。https://doi.org/10.1091/mbc.e02-10-0676

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  51. 马松永,黄H, Franke B, Williams R, Penley M, Qadota H,等。抽搐激酶抑制肌肉活动。中国生物医学杂志,2017;28(12):1591-600。https://doi.org/10.1091/mbc.e16-10-0707

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  52. Moerman DG, Plurad S, Waterston RH, Baillie DL。秀丽隐杆线虫的unc-54肌球蛋白重链基因突变,改变收缩力,但不改变肌肉结构。细胞。1982;29(3):773 - 81。https://doi.org/10.1016/0092 - 8674 (82) 90439 - 1

    文章中科院PubMed谷歌学者

  53. Ono S, Baillie DL, Benian GM. UNC-60B是一种ADF/cofilin家族蛋白,是秀丽隐杆线虫体壁肌肉中肌动蛋白正确组装成肌原纤维所必需的。中国生物医学工程学报,1999;29(3):344 - 344。https://doi.org/10.1083/jcb.145.3.491

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  54. Stevenson T, Mercer KB, Cox EA, Szewczyk NJ, Conley CA, Hardin JD等。unc-94编码秀丽隐杆线虫原调蛋白。中华分子生物学杂志,2007;36(4):336 - 50。https://doi.org/10.1016/j.jmb.2007.10.005

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  55. Bilbao A, Patel AK, Rahman M, Vanapalli SA, Blawzdziewicz J.滚动机动是主动重新定位的必要条件秀丽隐杆线虫在3D媒体中。中国生物工程学报,2018;

    文章谷歌学者

  56. 何文杰,李志强,李志强,等。的多环境表型秀丽隐杆线虫用于物理性能的稳健评估。bioRxiv。2020;2020.08.17.253583.https://doi.org/10.1101/2020.08.17.253583。

  57. Lecroisey C, Brouilly N, Qadota H, Mariol M-C, Rochette NC, Martin E,等。ZYX-1是秀丽隐杆线虫特有的zyxin蛋白,参与了肌营养不良蛋白依赖性的肌肉变性。分子生物学杂志,2013;24(8):1232-49。https://doi.org/10.1091/mbc.e12-09-0679

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  58. 香川H,高谷T,卢克萨娜R, Anokye-Danso F,阿明MZ,寺美HC。研究原肌凝蛋白和肌钙蛋白调节肌肉收缩和动物行为的秀丽隐杆线虫模型。In:横纹肌收缩的调控机制:施普林格;2007.p . 153 - 61。https://doi.org/10.1007/978-4-431-38453-3_14

    谷歌学者

  59. 庞美,英洁。肌肉力量是偏瘫上肢骨矿物质含量的决定因素:中风康复的意义。骨头。2005;37(1):103 - 11。https://doi.org/10.1016/j.bone.2005.03.009

    文章PubMed公共医学中心谷歌学者

  60. 马尼尼TM,克拉克BC。睡眠失调和衰老:最新进展。中国老年医学杂志(英文版);2012;29(1):1 - 4。

    文章谷歌学者

  61. Silventoinen K, Magnusson PK, Tynelius P, Batty GD, Rasmussen F.体型和肌肉力量与冠心病和脑血管疾病发病率的关系:一项基于100万瑞典男性的人群队列研究国际流行病学杂志,2009;38(1):110-8。https://doi.org/10.1093/ije/dyn231

    文章PubMed谷歌学者

  62. Wilkinson DJ, Piasecki M, Atherton PJ。年龄相关的骨骼肌质量和功能的损失:测量和生理学的肌纤维萎缩和肌纤维损失在人类。老龄化决议Rev. 2018; 47:123-32。https://doi.org/10.1016/j.arr.2018.07.005

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  63. 傅瑞德,李志强,李志强,等。老年人的虚弱:表型的证据。中国老年医学杂志,2001;26(3):344 - 344。https://doi.org/10.1093/gerona/56.3.M146

    文章中科院谷歌学者

  64. Hajek A, Bock J-O, Saum K-U, Matschinger H, Brenner H, Holleczek B,等。虚弱与医疗成本——一项前瞻性队列研究的纵向结果老龄化。2018;47(2):233-41。https://doi.org/10.1093/ageing/afx157

    文章PubMed谷歌学者

  65. Herndon LA, Schmeissner PJ, Dudaronek JM, Brown PA, Listner KM, Sakano Y,等。随机和遗传因素影响衰老秀丽隐杆线虫的组织特异性衰退。大自然。2002;419(6909):808。

    文章中科院PubMed谷歌学者

  66. 马瑞德,马瑞德,马瑞德,马瑞德,等。UNC-120/SRF独立控制肌肉老化和寿命秀丽隐杆线虫.衰老细胞。2018;17:e12713。

    文章公共医学中心谷歌学者

  67. Christian CJ, Benian GM.肌肉减少症动物模型。老化细胞。2020;19:e13223。

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  68. Broday L, Kolotuev I, Didier C, Bhoumik A, Podbilewicz B. Ronai Ze。LIM结构域蛋白UNC-95是肌肉附着结构组装所必需的,并受无名指蛋白RNF-5的调节秀丽隐杆线虫.中国生物医学工程学报,2004;26(6):857 - 867。https://doi.org/10.1083/jcb.200401133

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

  69. Hoppe PE, Chau J, Flanagan KA, Reedy AR, Schriefer LA。秀丽隐杆线虫unc-82编码一种丝氨酸/苏氨酸激酶,对生长过程中肌肉中的肌球蛋白丝组织很重要。遗传学。2010;184(1):79 - 90。https://doi.org/10.1534/genetics.109.110189

    文章中科院PubMed公共医学中心谷歌学者

下载参考

确认

我们要感谢Mathew Piasecki博士的有益讨论和Syed Tahsin Islam在数据处理方面的协助。

资金

一些菌株是由NIH研究基础设施项目办公室(P40 OD010440)资助的CGC提供的。这项工作得到了德克萨斯州癌症预防和研究所RP160806 (S.A.V)、美国国家航空航天局NNX15AL16G (S.A.V)、生物技术和生物科学研究委员会(BB/N015894/1 to N.J.S)和美国国家综合医学科学研究所(R01 GM118534 to g.m.b)的部分资助。

作者信息

作者及隶属关系

作者

贡献

LL和KK进行了NemaFlex和挖洞实验。LL和HQ进行免疫染色和捕获图像。LL和MN进行了统计分析,并制作了图表。LL、HQ、CMRL、NJS、GMB和SAV对结果进行了讨论和解释。LL和SAV撰写了论文。所有作者都阅读、编辑并批准了最终的手稿。LL、CMRL、GMB、NJS和SAV设计了这个项目。SAV监督了这项研究。

相应的作者

对应到Siva A. Vanapalli

道德声明

伦理批准并同意参与

不适用。

发表同意书

不适用。

相互竞争的利益

S. A. V.是NemaLife Inc.的联合创始人C线虫化验。其余的作者宣称他们没有竞争利益。

额外的信息

出版商的注意

伟德体育在线施普林格自然对出版的地图和机构从属关系中的管辖权主张保持中立。

补充信息

附加文件1:表S1。

变种人的名单,他们测量的肌肉力量,标准化肌肉力量和身体直径。图S1。体径对(A)测得的肌力和(B)归一化肌力的影响,即测得的肌力除以体径的立方。图S2。WT和Unc突变体的二维趋化指数。Unc突变体在琼脂平板上的标准2D趋化性与WT均无显著差异。误差条是平均值的标准误差。重复次数和平均样本量(N)为,WT: 4, N=36,unc-54 (s95): 4, n = 27,unc-22 (e66): 2, n = 22,unc-54 (s74): 4, n = 26,unc-22 (sf21): 5, n =31。使用学生t检验进行统计分析。不显著:p值>0.05。图S3。野生型和肌肉突变体肌节结构部位进行Phalloidin、MHCA、UNC-89、UNC-95、ATN-1染色。附注S1

权利和权限

开放获取本文遵循知识共享署名4.0国际许可协议,允许以任何媒介或格式使用、分享、改编、分发和复制,只要您对原作者和来源给予适当的署名,提供知识共享许可协议的链接,并注明是否有更改。本文中的图像或其他第三方材料包含在文章的创作共用许可协议中,除非在材料的信用额度中另有说明。如果材料未包含在文章的创作共用许可协议中,并且您的预期使用不被法定法规所允许或超出了允许的使用范围,您将需要直接获得版权所有者的许可。如欲查看本牌照的副本,请浏览http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.创作共用公共领域奉献弃权书(http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/)适用于本条所提供的资料,除非在资料的信用额度中另有说明。

转载及权限

关于本文

通过CrossMark验证货币和真实性

引用本文

Lesanpezeshki, L., Qadota, H., Darabad, M.N.et al。探讨小儿肌肉功能试验与肌节组织的相关性C线虫骨骼肌11, 20(2021)。https://doi.org/10.1186/s13395-021-00275-4

下载引用

  • 收到了

  • 接受

  • 发表

  • DOIhttps://doi.org/10.1186/s13395-021-00275-4

关键字

  • 肌肉生理学
  • 挖掘分析
  • 微流体
  • 肌肉遗传学
  • 肌节结构
Baidu
map